一針見「耗子尾汁」：手把手教會你「小鼠尾靜脈注射」操作技巧！
小鼠尾靜脈注射，是動物實驗中非常重要的一項實驗技術，在小鼠靜脈給藥等實驗中發揮著無可替代的作用。但是小鼠尾靜脈十分纖細，不易觀察，注射操作難度很高，「是個技術活兒」。
通過小鼠尾靜脈的解剖結構來定位理想穿刺點
「知己知彼，百戰不殆」。
成功的尾靜脈注射離不開對小鼠尾部解剖結構的深入理解。有研究通過鼠尾橫斷面連續切片，報道了鼠尾的詳細解剖結構[1]，盡管研究使用的是大鼠而不是小鼠，但兩者在尾部的解剖結構上十分相似，只是小鼠的尺寸更小。
從圖1（左）中可以看到，鼠尾的血管主要由三條靜脈（實心箭頭）和一條中央動脈（空心箭頭）組成，其余都是一些小的分支血管。中央動脈靠近腹側，且位置較深，觀察起來不容易，也不適用于穿刺。
背側靜脈和側面的兩條靜脈位置較淺，都可以作為穿刺的候選。
其中，側面的兩條靜脈相對背側靜脈更粗（尾部遠端管腔內直徑0.35 mm VS 0.18 mm），且走向更為清晰，通常作為穿刺的第一選擇。簡化的示意圖1（右）可以幫助大家更好的理解小鼠尾部的解剖結構。
不止是靜脈的選擇，鼠尾穿刺位置的選擇也同樣重要。穿刺位置的血管首先要足夠粗，在此基礎上，位置越淺，越容易穿刺成功，這點后續還會講到。
從圖1（左）中可以看到，近端的血管位置較深，遠端的血管位置較淺，但血管的管腔內徑并沒有隨著鼠尾的變細而成比例的變細。在鼠尾遠端，血管仍保持較粗的管腔內徑。這就為定位一個理想的穿刺點提供了可能。
因此，我們一般首選離鼠尾遠端約1/3的位置的側面靜脈進行穿刺。
選擇合適的注射器
小鼠尾靜脈的結構，導致我們對注射器提出了更高的要求。
我們需要選擇針頭足夠細又有一定長度的注射器。那么，到哪里去找到合適的注射器呢？注射器針頭粗細規格表示方法為數字+Gauge（G）。數字越大，代表針頭越細。
用于小鼠尾靜脈的針頭規格，最好在29G以上。目前，市面上容易買到的29G以上的注射器，主要是胰島素注射器。其規格有29G，30G和32G。參數如表1。
但是32G的注射器針頭長度太短，只有4 mm，并不方便操作，因此選擇針頭長度為8 mm和13 mm的30G和29G胰島素注射器，是最為合適的。
注射前一個人可以用微型手電筒或LED小夜燈等緊貼尾靜脈，在燈光的照射下，尾靜脈會被很清晰的顯示，此時，另一個人便進行注射操作。但該操作不易實現，需要多加練習，培養默契。
小鼠尾靜脈注射的操作步驟：
1.首先要固定小鼠，最簡單的固定方法就是把小鼠放在盒子里面，讓它的尾巴伸在盒蓋的外面，用手抓住小鼠尾巴，輕輕往外拽，就可以固定好小鼠了。這種固定方法，小鼠可以在盒子里面活動，固定的也不是很牢固，但是只要你尾靜脈注射的手法很熟練，就足以用來注射了。還有的固定方法就是用一個小的圓筒，最好是金屬做的，(可以在當地的鐵匠鋪，或者買白鐵鋪里面定做)首先是金屬比較結實，而且可以用來固定在鐵架臺上，方便操作。圓筒的一段有個蓋子可以拿下來，蓋子中間有個小孔，可以讓小鼠的尾巴伸出來(中間的小孔可以用膠布纏一下，防止銳利的邊緣割傷小鼠尾巴)。另外一段可以用金屬網的結構，網的形狀可以做成子彈頭的頭端形狀。網狀結構可以讓光線透近來，方便小鼠鉆進圓筒里面。圓筒的長度約10cm，直徑約 3～4cm，可以做個系列長度和直徑的圓筒，適合不同大小的小鼠。
2.固定好小鼠后就是注射了，一般用一次性的1ml的注射器就可以了，玻璃 的1ml的注射器也可以用，針頭用4號的就可以了。
3.注射前首先要讓小鼠的血管充盈�？梢圆捎�75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用溫水浸泡的方法。若小鼠的血管很不清楚，推薦采用溫水浸泡的方法，水溫以不燙手為宜。溫水浸泡2～3分鐘后，取出小鼠尾巴，用干棉球擦拭。等一會兒，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以進針了。若血管還不充盈，可以反復用溫水浸泡，切不可冒險注射，除非你手法很熟練，另當別論。
4.小鼠尾部共有四條血管，一般認為左右的兩條靜脈比較容易注射，多采用這兩條靜脈進針。一般要求進針部位靠近小鼠的尾端，這樣若注射失敗的話，還可以再向上選擇進針點。但是進針部位也不可以太靠下，因為越往下，靜脈越細，操作越難，一般以小鼠尾巴下三分之一的位置比較好。
5.最關鍵的就是進針了。進針時操作者左手食指和拇指固定住小鼠的尾巴，讓小鼠的尾巴在經過拇指后向下彎曲，進針點靠近拇指指甲。針頭和血管呈約30°角，針尖斜面朝上，輕輕挑刺入皮膚后針頭立即和血管平行，一般情況下一次就可以進入血管，可以將針頭刺入血管一大半，左右輕輕晃動針頭，確定針頭在血管內，就可以推注藥液了，正常情況下，推注的過程應該沒有明顯阻力，血管也不會鼓起。推液時動作宜輕柔，若發現血管鼓起，那是針頭沒有刺入血管，需立即拔出針頭。
